Eva Valle Salazar¹ y Carmen Chirinos-Zarraga²

La Linfadenitis caseosa o pseudotuberculosis es una enfermedad infectocontagiosa de evolución crónica transmitida por la bacteria Corynebacterium pseudotuberculosis; ataca principalmente a caprinos y ovinos, afectando ganglios linfáticos y otros órganos del animal. La enfermedad se presenta en forma cutánea o visceral. En la forma cutánea se pueden observar los abscesos en piel y en la forma visceral los abscesos se manifiestan en órganos importantes como pulmones, hígado y riñones. Causa deterioro en la condición orgánica del animal y evoluciona hacia estados caquécticos de curso crónico (Euzeby, 1999; León y col., 2002; Yeruhanm y col., 2000).

La Linfadenitis es una enfermedad cosmopolita presente en los cinco continentes y en casi todas las zonas geográficas definidas por la Organización Mundial de Sanidad Animal (Ruiz, y col., 2007). Es una patología de tipo crónico que produce altas pérdidas económicas en la cría e industria caprina y ovina mundial, por el deterioro progresivo del animal, traducido en disminución de la producción de carne, leche y lana (Ruiz, y col., 1995; Estevao y col., 2009). Hasta el momento en Venezuela el diagnóstico clínico y microbiológico ha permitido evidenciar la presencia de esta patógeno, sin embargo en vista del escaso conocimiento de esta patología en el país los diagnósticos no están siendo pertinentes.

Actualmente la infección por C. pseudotuberculosis ha sido reconocida como una enfermedad zoonótica emergente. Las infecciones en humanos son raras y usualmente se presentan como Linfadenitis adquirida por exposición ocupacional (Estevao, y col., 2006). También esta patología se reporta como una zoonosis ya que se ha diagnosticado en pastores y trabajadores de matadero (Ruiz, y col., 2007). El objetivo de este trabajo consistió en difundir casos clínicos observados en un rebaño caprino y ovino y los diagnósticos de laboratorio que se realizaron y que pudieron confirmar la presencia de C. pseudotuberculosis.

:

Situación en Venezuela

En Venezuela poco se ha investigado sobre la linfadenitis caseosa a pesar de estar diseminada en la mayoría de los rebaños caprinos y ovinos del país. Fue introducida por las importaciones de animales realizadas con fines de mejoras genéticas de nuestros rebaños. Márquez (1969) indica que en el año 1963, la Facultad de Ciencias Veterinarias, FCV-UCV, importó 21 animales caprinos de raza Nubia, Saanen, Alpina Francesa y Toggembourg y fue a partir de lesiones que se presentaron en estos animales que los profesores e investigadores Piero Gallo y Herbert Morris aislaron el germen. Siendo esta la primera vez que se observó dicha patología en el país.

Márquez (1970) efectuó estudios clínicos de la enfermedad y realizó diagnósticos anatomopatológicos, demostrando la susceptibilidad de los caprinos criollos al Corynebacterium pseudotuberculosis por contagio provocado o natural. En los resultados obtenidos por Márquez (1969), los animales presentaron: enflaquecimiento progresivo, presencia de abscesos localizados en los ganglios linfáticos de la cabeza, preescapulares, inguinales y retromamarios con pus pegajoso en su interior, también observaron secreciones nasales, mastitis, aumento de volumen de las articulaciones, paraplejia del tren posterior, edema del pecho y bajo vientre.

Chirinos-Zarraga (2005) realizó un estudio de caracterización del C. pseudotuberculosis obteniendo  una prevalencia de 0 a 8% entre los 17 rebaños estudiados, las muestras fueron tomadas de 65 cabras que presentaron abscesos y el C. pseudotuberculosis fue aislado del 67,69% de los animales. La importancia de este patógeno radica en la presentación de varios factores de virulencia que incluyen glucolípidos y ácidos micólicos de la pared celular, además de las exoenzimas fosfolipasa D principal factor de virulencia y esfingomielinasa (Alemán y Spier. 2001).

:

Patogenia

La patogenia de esta enfermedad está relacionada principalmente a dos factores, la toxina fosfolipasa D y los ácidos corynomicólicos; ambos contribuyen a la inflamación, edema y diseminación en el desarrollo de los abscesos. (Brown y Olander 1987; Songer, 1997). La bacteria en el ambiente se envuelve en una capa protectora pudiendo estar hasta treinta años a sol y agua. Cuando el animal la ingiere, los jugos gástricos destruyen la cápsula, liberándose e iniciando su reproducción. La bacteria entra al organismo, a través de heridas que se puedan presentar en la piel, por muy pequeñas que sean, luego se ubican en los ganglios linfáticos, se diseminan de nódulo a nódulo linfático y finalmente se formarán los abscesos muco-purulentos. Una vez que haya avanzado, se ubica en todos los nódulos linfáticos afectando a los pulmones e hígado, formando una masa de abscesos, lo cual puede conducir a la muerte (Fig. 1, 2 y 2ª) (Salazar, 2010).

Fig. 1 Cabra con absceso Preescapular

Fig. 2 Cabra con absceso Preescapular

Fig. 2a Drenado de absceso Preescapular.

¿Cómo se transmite?

La transmisión de esta patología está íntimamente ligada a las prácticas de manejo realizadas sin las adecuadas prevenciones higiénicas, no se presenta predisposición de raza o sexo; la edad juega un papel importante porque los animales adultos están sometidos a mayor riesgo por el número de esquilas en caso de ovinos y al manejo de rutina. (Pinochet, 1992). Los porcentajes de aislamiento son más altos en cabras y ovejas adultas mayores de un año, sugiriendo una correlación directa entre la edad y la prevalencia de la enfermedad (Chirinos-Zarraga y col., 2005).

:

Diagnóstico de la linfadenitis caseosa

El diagnóstico presuntivo se basa en la observación y palpación de ganglios superficiales aumentados de tamaño, signos clínicos como fiebre y pérdida de peso y datos epidemiológicos como prevalencia y edad de los animales (Estevao, y col., 2006). El diagnóstico definitivo se realiza por cultivo del microorganismo a partir del material de los abscesos obtenidos por procedimiento quirúrgico o por necropsia (Alemán y Spier, 2001). También se puede hacer un estudio histopatológico.

Se puede diagnosticar a través de cultivo en Agar sangre, sangre Telurito, suero Loeffer, Infusión cerebro–corazón (BHI) y diagnósticos con técnicas de biología molecular (Estevao y col., 2006). La bacteria es un bacilo pleomorfo, no flagelado con forma de coco-bacilo, tiene respiración aerobia aunque se comporta como anaerobio facultativo, por lo que se plantea que incrementando la concentración de CO2 en el medio de cultivo se facilita su aislamiento primario (Ruiz, y col., 2007).

:

Prevención y control

Las dificultades que se presentan para un eficiente control de esta patología son la pobre respuesta y costo de los agentes terapéuticos, limitación de diagnosticar subclínicamente a los animales afectados, no disponer de métodos diagnósticos eficientes y rápidos, falta de vacunas y el desconocimiento de los productores de la gravedad de la enfermedad (Arrigo, 1984; Williamson, 2001).

Al tener conocimiento de la enfermedad los animales se deben separar Inmediatamente del resto del rebaño y  tratarlos de último, una vez culminado las labores con los sanos.

Otra condición es la limpieza y desinfección extrema de los utensilios que se emplean para el manejo de los animales, hay que evitar producir heridas en los animales y en caso que ocurran desinfectar inmediatamente, ya que el Corynebacterium es muy sensible a los antisépticos y desinfectantes, el tratamiento con antibióticos no es recomendado, salvo en animales de alto valor, ya que el éxito del antibiótico es limitado (Pinochet, 1992).

Los abscesos se deben drenar y el material contenido no debe caer en el suelo ya que es un foco de contaminación. También se puede hacer una incisión en la parte baja del absceso y drenar todo el material, lavarlo con solución de yodo limpiar bien y administrar un producto cicatrizante y repelente para evitar las moscas; repetir este tratamiento las veces que haga falta. Los corrales se deben desinfectar con yodo al 10% o formol al 5%. Como es un patógeno Gram Positivo se pueden aplicar antibióticos como la Penicilina o de larga duración para no maltratar mucho al animal. Finalmente al comprar animales se les debe dar cuarentena antes de entrar en contacto con el rebaño (Salazar, 2010).

:

Estudio de Casos Clínicos

Se realizó la evaluación de una finca ubicada en Maracay, Edo Aragua, perteneciente a un área de Bosque Seco Tropical a 10º 16´ 20″ N y 67º 36´35″ O, a una altura de 450 msnm, con una precipitación media anual de 1090,9 mm, un período de lluvias comprendido entre Mayo-Octubre y un período de sequía entre Noviembre-Abril con una temperatura min y máx de 17,6°C y 32,3°C respectivamente (INIA, 2008). La finca en estudio contaba con un total de 10 caprinos de raza Canaria y 12 ovinos mestizos raza West African.

Se muestreó un absceso submandibular de una cabra y un absceso inguinal y otro retromamarios de una oveja pertenecientes al rebaño. Estas muestras debidamente conservadas fueron enviadas al laboratorio de Sanidad Animal- Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA), donde pudieron confirmar el diagnóstico clínico que suponía la presencia de C. pseudotuberculosis (Figura 3 y 4).

Figura 3a. Abscesos ubicados en la parte lateral del miembro posterior y cuello.
3b. La imagen muestra el momento cuando uno de ellos es incidido quirúrgicamente y luego lavado con solución de yodo.

:

Figura 4. Material extraído del absceso e introducido en el tubo de ensayo con medio de trasporte.

Se hizo seguimiento durante un año al rebaño caprino observándose en el mes de Febrero el mayor número de casos; cuatro (4), que representó el 33,3% de los animales. En Marzo se redujo a un caso (8,3%), en Abril, Mayo y Junio se mantuvo el número de casos (2, 2 y 2 respectivamente), 16,6% cada mes; en Julio no se presentaron casos y en Agosto se presentó uno (8,3%); en los meses restantes no se detectaron casos clínicos (Gráfico 1).

Gráfico 1

En el grupo de ovinos se registraron dos (2) casos en Agosto representando 16.66 % y en Noviembre tres (3) casos (25 %) (Gráfico 2).

Gráfico 2

El diagnóstico clínico de la linfadenitis caseosa está sujeto al momento de la observación visual de los abscesos y palpación de los ganglios. Es de hacer notar que la cría ovina y caprina en el país cada día se está desarrollando, lo que representa un recurso económico para el mercado interno con miras al internacional. Por tanto es necesario contar con rebaños sanos que al ser consumidos garanticen la salud humana.

En el caso de Linfadenitis Caseosa los diagnósticos clínicos, de laboratorio y algunos trabajos que se han realizado en el país confirman la presencia del C. pseudotuberculosis, por esta razón es necesario recoger los datos en fincas, mataderos y en los certificados de importación estar seguros que no estamos comprando animales enfermos. Además se deben activar los sistemas de vigilancia epidemiológica para el control de esta patología.

:

:

Bibliografía.

• Alemán, M and Spier S. (2001). Corynebacterium pseudotuberculosis In Large Animal Internal Medicine 3^rd ed. Edited by Smith P. B. St Louis: Mosby Co. 1078-1084.
• Arrigo, J. (1984). Pseudotuberculosis o apostemas de los ovinos. Informe URISA Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Argentina.
• Brown, C and Olander, H. (1987). Caseous lynphadenitis of goats and sheep: A review. Vet. Bull 57: 7445-7448.
• Chirinos-Zarraga, C; Scarameli, A and Rey-Valerion, C. (2005). Bacteriological Charaterizacion of Corynebacterium pseudotuberculosis in Venezuela goats flocks. Small Rumin Res. 65: 170-175.
• Estevao, S; Gallardo, A; Abalos, M; Álvarez, L;  Núñez, N; Guevara, D y Jensen, O. (2009). Corynebacterium pseudotuberculosis, potencial agente zoonótico, revisión de casos. REDEVET. Revista electrónica de Veterinaria. ISSN 1695 – 7504. Vol 10. N° 10. Disponible en: http://revista.veterinaria.org.
• Estevao, S; Gallardo, A; Abalos, A; Jodor, N y Jensen, O. (2006). Actualización sobre Linfadenitis Caseosa: El Agente Etiológico y la Enfermedad. Veterinaria Argentina, 23(224): 258-278.
• Euzeby, J.(1999). Corynebacterium pseudotuberculosis. In Dictionnaire de bacteriologie veterinaire. Disponible en: http/www.bacterio.cict.fr/bacdic/pseudotuberculosis. Htlm.
• Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA). (2008). Histórico de datos climáticos. Instituto de Investigaciones Agrícolas. CENIAP- Aragua, Venezuela.
• León-Viscainol, L; Garrido Abellán, F; González Candela, M y Cubero Pablo, M. (2002). Clínica de la pseudotuberculosis. Rev. Ovis, htt/www.exopol.com/circulares/205.htmi.
• Márquez. (1969-70) Estudio clínico de la Linfadenitis caseosa en caprinos de Venezuela. Criollos e importados. Rev. Med. Vet. Vol. N 1- 8.
• Pinochet, L. (1992). Caseosa un problema sin solución. Monografía de Medicina Veterinaria. Vol 14 (1) 21-27. Chile.
• Ruiz, J; Barrera, M y Frías, M. (2007). Linfadenitis Caseosa I: Aspectos históricos, etiológicos y clínicos. RECVT. Revista Electrónica de Clínica Veterinaria ISSN 1988-3331. Vol. II. N° 8. Disponible en: http://www.veterinaria.org/revistas/recvet.
• Ruiz, J; Quintana, M y Barrera, M. (1995). Aislamiento y clasificación bioquímica de una cepa de Corynebacterium pseudotuberculosis en la provincia La Habana. Rev. De Salud Animal. 17:3, 307-309.
• Salazar, P. (2010). Algunos Comentarios sobre Linfadenitis Caseosa. Programa de Escuelas de Campo. Perulactea.com. Bucaramanga, Colombia. E-mail: pedro_cabras@yahoo.com
• Songer, J. (1997). Bacteria phospholipases and their role in Trends Microbiol. 5: 156-161.
• Williamson, L. (2001).Caseous lymphadenitis in small ruminants. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 17:359-371.
• Yeruhanm, S; Fridman, D. Elad y S Perl. (2000). Association between milk production, somatic cell count and bacteria dermatoses in three dairy cattle herds. Vet. J. 78: 250-253.

:

:

Eva Valle Salazar y Carmen Chirinos-Zarraga.

Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA) Aragua;
Universidad Nacional Experimental Francisco de Miranda (UNEF), Falcón.
evsalazar@inia gob.ve