Gustavo Morales; Ana T. Guillen, Luz A. Pino; Espartaco Sandoval y Jairo Morales
Los nemátodos son parásitos del tracto gastrointestinal de los rumiantes, debido a las características de su ciclo biológico, que en la mayoría de las especies es directo y con formas de vida libre, resistentes a las condiciones adversas del medio exterior, principalmente las etapas de huevo embrionado y larva infectante (Levine, 1963; Donald, 1973; Waid y col., 1985); tienen una distribución cosmopolita, es decir se encuentran en prácticamente todos los países y regiones del mundo (Hansen y Perry, 1994), lo cual es facilitado por la introducción de rumiantes domésticos en países de los cinco continentes, producto de las importaciones-exportaciones de ganado en pie.
Según Urquhart y col. (1999), los factores que actúan como facilitadores del desarrollo de trastornos de origen parasitario en granjas, son básicamente los siguientes:
a) Introducción a la granja de animales infectados, sobre todo cuando su nivel de infección es elevado, ya que al defecar contaminaran el pastizal con las formas de diseminación de los parásitos que albergan.
b) Incremento de la cantidad de estadios con poder infectante en los pastizales.
c) Introducción a la granja de animales susceptibles.
d) Alteración de la susceptibilidad (incremento) debido a situaciones de estrés como consecuencia de castraciones, vacunaciones, partos, traslado de animales y carencias alimentarias.
Etiológicamente, la nematodiasis gastrointestinal es una afección parasitaria causada por la presencia en el abomaso, intestino delgado e intestino grueso de nemátodos pertenecientes a diversas familias, que ocasionan trastornos gastrointestinales como diarreas, caquexia y anemia. Generalmente, los agentes patógenos responsables son trasmitidos por el alimento, en este caso los pastos o a través del agua de bebida y en algunos casos muy específicos mediante penetración transcutánea (Strongyloides papillosus, Bunostomum phlebotomum) o a través del calostro (Toxocara vitolorum) (Morales y Pino, 2009). El parasitismo gastrointestinal se considera como una de las patologías mayores, por ocasionar disminución de la fertilidad y muerte en animales jóvenes (Mandonnet, 1995), además de afectar negativamente la tasa de crecimiento, la producción de leche y de lana (Gruner y Cabaret, 1985), lo cual ha contribuido con la frecuente práctica de los tratamientos masivos bajo la falsa premisa de que “si un animal esta parasitado, todos lo están”, generalmente asociados a dosificaciones incorrectas e innecesarias en muchos animales (Morales y col.,1998), favoreciendo la aparición de quimioresistencia (Coles y Roush , 1992; Viera y Cavalcante,1999).
Esta práctica de tratamientos masivos es totalmente injustificada, ya que los niveles de infección parasitaria no son similares ni siquiera al interior de una misma raza y sexo, aunque se trate de animales de semejantes condiciones fisiológicas y edad, incluso bajo el mismo sistema de cría (Pino y Morales, 2002b). La práctica de los tratamientos en masa y frecuentes favorece la aparición de cepas de parásitos quimioresistentes porque se eliminan de la población parasitaria a los parásitos con genotipos sensibles, de ahí la necesidad de implementar tratamientos selectivos, concentrando los mismos en aquellos animales más susceptibles a padecer enfermedad parasitaria o de la mayor contaminación de los pastizales.
Justificación de los tratamientos selectivos en rumiantes
a) Distribución de los parásitos en el seno de la población hospedadora
Según Anderson (1982), el principal factor responsable de la sobredispersión de los parásitos en el seno de la población hospedadora esta vinculado a la heterogeneidad que existe entre dichos hospedadores en relación a su exposición y susceptibilidad a la infección, lo cual es sin duda un reflejo de su inmunocompetencia, que se expresa en la rata de adquisición y permisividad para el desarrollo de los parásitos por parte de un hospedador.
En animales infectados en condiciones naturales es normal encontrar que al interior del rebaño tan solo una fracción del mismo presente elevadas cargas parasitarias y el resto del rebaño alberga cargas leves o moderadas o están negativos (Pence y col., 1983; Morales, 1989; Cabaret y Morales, 1983), fracción ésta que es casi siempre inferior al 20% del total de animales del rebaño (Roberts y Swan, 1982) y que incluso al interior de la misma no todos requieren ser sometidos al tratamiento antihelmíntico (Morales y col., 2007).
Este fenómeno tan frecuentemente observado ha constituido un impulso para el desarrollo de investigaciones que proponen sustituir los tratamientos en masa por los selectivos, debido a que cuando la agregación de los parásitos es intensa, el tratamiento de tan solo un bajo porcentaje del rebaño, es decir, de la fracción que alberga las mayores cargas y que son afectados clínicamente y en sus cualidades productivas y reproductivas, garantiza una drástica reducción de la contaminación de las pasturas, además de resolver el problema derivado de la enfermedad parasitaria.
Ejemplo:
El análisis coproscópico cuantitativo de un lote de 81 ovinos infestados en condiciones naturales permitió conocer la distribución de frecuencias de los recuentos de huevos de Estróngilos digestivos por gramo de heces (RHPG) observándose que el porcentaje de corderos con infestación alta fue tan solo del 7,39%, mientras que al nivel de infección leve le correspondió un 29,61% y los negativos representaron el 62,96% (Cuadro 1).
Cuadro 1. Distribución de frecuencias de los recuentos de huevos de
Estróngilos digestivos por gramo de heces (RHPG) en ovinos jóvenes seleccionados como sementales en la sección de ovinos del Instituto de Producción Animal (I.P.A) d e la Facultad de Agronomía de la Universidad Central de Venezuela
RHPG | Frecuencia | Porcentaje | Nivel de Infección |
|---|---|---|---|
0 | 51 | 62,96 | Negativo |
50 | 5 | 6,17 | Leve |
100 | 2 | 2,47 | Leve |
150 | 3 | 3,70 | Leve |
200 | 3 | 3,70 | Leve |
250 | 3 | 3,70 | Leve |
300 | 2 | 2,47 | Leve |
450 | 1 | 1,23 | Leve |
500 | 4 | 4,94 | Leve |
550 | 1 | 1,23 | Leve |
1 250 | 2 | 2,47 | Alto |
1 650 | 1 | 1,23 | Alto |
2 450 | 1 | 1,23 | Alto |
2 550 | 1 | 1,23 | Alto |
3 200 | 1 | 1,23 | Alto |
Fuente: Morales y col., 2002b
b) Resistencia frente a las infestaciones parasitarias
Resistencia: Es la que presentan aquellos animales que limitan el establecimiento y posterior desarrollo de la infestación parasitaria. Los animales resistentes o están negativos o presentan cargas parasitarias que oscilan entre leves y moderadas. Además limitan la capacidad de postura de las hembras de los parásitos. Esta resistencia es de naturaleza genética y por consiguiente heredable (Baker, 1999; Morales y col., 2006a; 2006b) y constituye un fuerte componente de la adaptabilidad como resultado de la selección natural que puede haber sido incrementado indirectamente a través de asociaciones favorables con otras características como la tasa de crecimiento, la producción de leche, entre otras que han recibido mayor énfasis en los programas de mejoramiento genético (Cundiff, 1985).
Resiliencia: Es la habilidad del animal de mantener niveles productivos aceptables a pesar de la infección parasitaria, manteniendo un hematocrito normal y buena condición corporal. Su primera definición aplicada a la parasitología fue realizada por Mitchel (1982), quien hablaba de resiliencia a la enfermedad y la definía como la habilidad para soportar la enfermedad consecuencia de una infestación parasitaria. También se puede establecer considerando el recuento de h.p.g y la condición corporal (Morales y col, 2006a; Morales y col, 2006b)
Acumulador de parásitos (Sensible o Wormy Animal): Es la fracción de animales, generalmente representada por un pequeño porcentaje de animales del rebaño que concentra las mayores cargas parasitarias y cuya salud y cualidades productivas y/o reproductivas se ven negativamente afectadas (Morales y col, 2006 a; Morales y col, 2006b).
Población de parásitos en refugio: El término refugio puede ser definido como la proporción de la población parasitaria que no está expuesta a una medida de control químico en particular (escapando así a la selección por resistencia). En parásitos internos, esto incluye a la proporción de la población de nemátodos que viven fuera del hospedador, en la pradera (VanWyk, J, 2001).
Conceptos básicos en programas de Tratamientos Antihelmínticos Selectivos (TAS)
Helmintoresistencia: Es una característica variable tanto intra como entre razas, es de naturaleza genética y por consiguiente, heredable. Lo cual posibilita la selección eficaz de animales poco sensibles a la infección parasitaria o cuya respuesta inmunológica limite el tamaño de la población de parásitos instalados.
La selección de animales con esta característica (helmintoresistencia) no va en detrimento de las características productivas o zootécnicas, a que se ha reportado la existencia de una correlación positiva entre helmintoresistencia y productividad.
c) Quimioresistencia y Tolerancia
Quimioresistencia o Resistencia antihelmíntica: Es la habilidad heredable y producto de la selección por tratamientos de algunos nematodos de sobrevivir al tratamiento antihelmíntico, dicha resistencia ha sido encontrada en parásitos de ovinos, caprinos y equinos y sobre todo han estado principalmente involucrados los Benzimidazoles y sus derivados. Este fenómeno está asociado con el uso frecuente de las mencionadas drogas, ha sido reportada la resistencia cruzada entre Benzimidazoles y parece estar presente también entre Milbemicinas y Avermectinas.
Tolerancia: Es cuando una población de parásitos que no ha estado previamente expuesta al antihelmíntico, no es removida completamente por él, es decir, se trata de individuos que son naturalmente resistentes a la acción de un determinado quimioterápico, con el cual nunca han estado en contacto.
Reversión: Se ha descrito como el regreso a la susceptibilidad a una droga, de una cepa de parásito resistente determinada.
Resistencia cruzada: Ha sido descrita entre drogas diferentes pero con similar mecanismo de acción. Por eso se recomienda considerar a los derivados benzimidazólicos como un simple grupo de químicos en planes de control, dada la existencia de resistencia cruzada entre sus integrantes.
Especie dosis limitante (EDL): Se refiere a aquellas especies parásitas que requieren una máxima cantidad de producto para ser adecuadamente eficaz. Todos los antihelmínticos y endoctocidas tienen una especie dosis limitante, por ejemplo especies de Cooperia spp. representan la EDL para las lactonas macrocíclicas a las cuales pertenecen los endoctocidas: doramectina; eprinomectina, ivermectina y moxidectina. Entre estas lactonas macrocíclicas la que ha mostrado una buena eficacia y persistencia contra Cooperia spp. es la doramectina.
Método de selección de la fracción de los rumiantes a ser sometidos a TAS
Un pre-requisito indispensable para la identificación de los rebaños afectados por problemas parasitarios y proceder a seleccionar al interior del rebaño y escoger el lote de individuos a ser sometidos a tratamiento antihelmíntico, es la utilización de criterios marcadores de la infestación parasitaria, dentro de los cuales figuran los RHPG y la sintomatología clínica vinculada a dichas infestaciones que se resume a continuación:
La anemia es el síntoma sobresaliente vinculada a especies del género Haemonchus (bovinos, ovinos y caprinos) y Mecistocirrus (bovinos) y en menor grado a Trichostrongylus axei. El edema sub-mandibular se asocia a especies de ubicación gástrica y hematófagas como los géneros antes mencionados y al Bunostomum como resultado de la anemia ocasionada por especies succionadoras de sangre.
La diarrea es el trastorno digestivo mas común en el caso de Trichostrongylus, la cual puede ser sanguinolenta en las infestaciones por Chabertia spp. y Strongyloides papillosus ó alternarse con periodos de estreñimiento como ocurre en Haemonchus. En el caso de Oesophagostomum se presenta una diarrea incoercible, serosa y de color verde con muy mal olor, asociada con deterioro del estado general y caquexia.
Coproscopía Cuantitativa
Las técnicas de diagnostico coproscópico, permiten detectar formas de diseminación de parásitos de los pulmones, como las larvas (L1) de Dictyocaulus spp de huevos de trematodos hepáticos (Fasciola hepatica), del rúmen (Cotylophorum spp), siempre que se utilicen como líquidos de flotación soluciones de alta densidad o se recurra a métodos de concentración por sedimentación. Además de los parásitos del tubo digestivo como Moniezia, Toxocara, Trichuris (Figura3), Skrjabinema, Strongyloides (Figura 2) y los estróngilos digestivos (Figura 1), que incluye a diversos géneros que se agrupan en familias de gran importancia en nuestro medio tropical, como Haemonchus, Mecistocirrus, Ostertagia, Trichstrongylus, Cooperia (Familia Trichostrongylidae); Bunostomum (Familia Ancylostomatidae) y Oesophagostomum (Familia Strongylidae), también es frecuente observar ooquistes de Eimeria spp (Figura 2).

Figura2.[1] Huevos de estróngilos digestivos,[2 ] Huevo de Strongyloides spp y ooquiste de Eimeria spp, [3] Huevo de Trichuris spp.
El examen coproscópico, permite la visualización de los huevos y su cantidad, de ahí que sea de gran importancia recurrir a técnicas cuantitativas como las de Wisconsin o de McMaster, pero esta información se debe complementar con la condición corporal (bovinos), valor hematocrito (bovinos, ovinos, caprinos) y presencia o no de diarrea, emaciación, abdomen abultado, edema sub-mandibular entre otros., para hacer una adecuada interpretación de los resultados y seleccionar al interior del rebaño la fracción de animales que requieren tratamiento. En caso de estar interesado en conocer los géneros que están presentes se recurre a la realización de coprocultivos para lograr la evolución de los huevos hasta larva infestante (L3), ya que estas últimas presentan características morfológicas y morfométricas que permiten su diagnóstico hasta este nivel. En el cuadro 2, se suministra una guía para la interpretación del recuento de h.p.g de Estróngilos digestivos en bovinos de uso corriente en laboratorios de investigación en helmintología veterinaria (Morales y Pino, 2009).
Cuadro 2. Guía para la interpretación de los recuentos de huevos de estróngilos digestivos por gramo de heces (RHPG) empleando la cámara de McMaster en rumiantes con infecciones mixtas
ESPECIE | Leve | Moderada | Alta |
|---|---|---|---|
Bovina | 50-200 | >200-800 | 800 |
Bovina | <50 | 50-350 | 400 |
Bovina | 15-50 | >50-500 | 500 |
Ovina | 50-800 | >800-1200 | 1200 |
Ovina | <300 | 400-950 | 1000 |
Caprina | <500 | 600-2000 | 2000 |
Correcta toma de las muestras:
Para la realización de exámenes coproparasitológicos, es indispensable que las muestras de heces sean adecuadamente colectadas y preservadas. Una materia fecal inadecuadamente recolectada (contaminada con orina o suciedades), pobremente conservada o viejas son de muy poco valor para la emisión de un diagnóstico confiable. La muestra debe ser tomada directamente del recto del animal siendo de gran utilidad, o bien el uso de guantes plásticos limpios o de bolsas plásticas de las empleadas para la conservación de alimentos. Debe evitarse el recoger muestras directamente del suelo, ya que estas normalmente estarán contaminadas con larvas de nematodos de vida libre, así como de huevos de ácaros que puede confundir a un microscopista no experimentado.
Las muestras deben ser colocadas en recipientes limpios, provistos de tapa, los cuales después de ser debidamente identificados (identificación del animal, sexo, raza, edad, propietario, fecha) y cualquier otra información que se considere relevante, siendo importante el uso de libretas ad-hoc. Las muestras serán introducidas en cavas provistas de material refrigerante para su traslado al laboratorio y ser procesadas a la mayor brevedad posible (1 a 2 horas ), en caso de no ser posible, se deben mantener refrigeradas (4°C) hasta el momento de su procesamiento.
Ejemplo:
El estudio de la dinámica de la infección por estrongilidos digestivos en bovinos a pastoreo (Cuadro 3). permitió evidenciar la variación en el curso de un año de los porcentajes de animales infestados y los porcentajes de acumuladores de parásitos (Morales y col, 2001).
La clasificación de los bovinos considerando su nivel de infección, evidenció que durante el transcurso del año, tan solo un bajo porcentaje de bovinos concentra las mayores cargas parasitarias y su tratamiento selectivo garantiza la remoción de elevadas cargas parasitarias de los animales tratados, así como una drástica reducción de la contaminación de los pastizales con las formas de diseminación de los parásitos. La combinación de la información derivada de la coproscopía cuantitativa conjuntamente con la condición corporal, nos permitiría realizar dicho tratamiento sobre una fracción aún más pequeña que la que tendríamos que tratar si solo consideramos los RHPG; pero en este caso la reducción de la contaminación del pastizal seria menos drástica, ya que aquellos animales que aún soportando altas cargas parasitarias, conservan una buena condición corporal (condición de resiliencia) no serían sometidos a tratamiento antihelmíntico.
Cuadro 3. Porcentaje de bovinos acumuladores de parásitos (W.A) y porcentaje de infectados por estróngilos digestivos en el curso del año
Mes | W.A (%) | Porcentaje de Infectados |
|---|---|---|
Mayo (1998) | 5,5 | 46,3 |
Junio | 25,9 | 68,5 |
Julio | 29,6 | 75,9 |
Agosto | 7,4 | 66,6 |
Septiembre | 3,7 | 44,4 |
Octubre | 3,7 | 53,7 |
Noviembre | 0 | 53,7 |
Diciembre | 11,1 | 72,2 |
Enero (1999) | 5,5 | 44,4 |
Febrero | 0 | 1,8 |
Marzo | 5,5 | 20,4 |
Abril | 7,4 | 50 |
Fuente: Morales y col, 2001
Índice de diarrea
Para el caso de nemátodos que ocasionan diarrea se esta utilizando una calificación relacionada con la intensidad de la diarrea (parásitos de los géneros Trichostrongylus, Ostertagia y Teladorsagia que ocasionan anorexia, heces blandas o diarrea y emaciación), cuya presencia constituye el criterio de selección al interior del rebaño (Figura 4).
Figura 4. Ovino con diarrhea
La Haemonchosis ocasiona anemia y es frecuente observar la presencia del edema sub-mandibular (también frecuente en Distomatosis Hepática), pero rara vez diarrea (Figura 5).
Figura 5. Edema sub-mandibular
FAMACHA
Este método fue desarrollado para ovinos en zonas de Sudáfrica en donde el Haemonchus contortus es factor limitante para el desarrollo de esta ganadería y actualmente esta siendo utilizado en casi todo el mundo.
Los niveles de infección parasitaria por estróngilos digestivos hematófagos se correlacionan negativamente con el hematocrito (2002 a), por consiguiente la medida de este parámetro hematológico puede ser empleada como un indicador indirecto de la resistencia a la infección parasitaria, especialmente en aquellas explotaciones en las cuales estén presentes especies parásitas hematófagas como el Haemonchus contortus. La patogénesis de la haemoncosis esta vinculada a una anemia hemorrágica debida a los hábitos hematófagos del parásito, cuando la infección es aguda su característica principal es una progresiva y dramática caída del valor hematocrito, asociada a una continua pérdida de hierro y proteínas a nivel del tracto intestinal con incremento de la inapetencia, lo cual afecta la función eritropoyética de la médula y el hematocrito baja aún más poco antes de que la muerte ocurra.
Malan y Van Wyk (1992), evidenciaron la existencia de correlación entre el color de la conjuntiva ocular, el valor hematocrito y el nivel o grado de infección por Haemonchus contortus mediante la observación de la coloración de dicha mucosa. Estas coloraciones fueron pre establecidas con ayuda de computación gráfica y se representaron cinco grados del valor hematocrito, incluyendo los límites para cada grado y comprobaron que la correlación entre los grados de anemia y la infección por Haemonchus contortus a un nivel de probabilidad de α= 0,5 era de 0,80. Este hallazgo permitió desarrollar el método de control parasitario conocido como FAMACHA, cuya finalidad es identificar al interior de un rebaño, la fracción de animales que requiere tratamiento y de esta manera optimizar los tratamientos selectivos al disminuir el lapso que media entre el disponer de resultados de laboratorio y aplicar tratamiento, recurso este cuya frecuencia de uso puede reducirse con la aplicación de este método.
Este sistema utiliza una carta de ilustraciones a color de los cinco grados de anemia con las respectivas indicaciones en torno al requerimiento de tratamiento antihelmíntico (Figura 6).
Figura 6. Método FAMACHA
La aplicación del sistema FAMACHA conlleva a variados beneficios al productor, entre los cuales destacan la reducción de la frecuencia de tratamientos, distinción de los animales considerando su capacidad de defensa frente a la infección por Haemonchus contortus, lo cual permite realizar una selección genética e incorporar un valor agregado, como es la resistencia a la infección parasitaria a los animales que serán destinados a la actividad reproductiva, además de disminuir la presión de selección sobre H. contortus por la resistencia a los antihelmínticos. Sin embargo y a pesar de sus bondades y practicidad, debemos resaltar la posibilidad de diagnósticos erróneos, principalmente en zonas en donde Fasciola hepatica y Trichostrongylus colubriformis constituyen un problema (FAO, 2003), lo cual nos permite recordar la importancia del recurso del laboratorio en helmintología y no pensar que estas nuevas metodologías surgieron para reemplazar en vez de complementar a la coproscopia cuantitativa y a la necropsia helmintológica.
Ejemplo:
El presente ejemplo (Cuadro 4) corresponde a una explotación ovina en la cual se diagnosticó previamente la presencia de Haemonchus contortus y las ovejas fueron examinados con la carta FAMACHA, además de determinarse el valor del hematocrito y recuento de huevos de estróngilos digestivos por gramo de heces (R.H.P.G) en estos animales.
Cuadro 4. Valores del hematocrito y recuento de huevos por gramo de heces en ovinos discriminados de acuerdo al color de la conjuntiva ocular
Color Conjuntiva Ocular | N | Hematocrito | Símbolo | RHPG | Símbolo |
|---|---|---|---|---|---|
Rojo | 119 | 31,87 ( 32) | D | 422 (50) | A |
Rojo Pálido | 28 | 25,8 ( 26) | C | 1259 (100) | AB |
Rosado | 11 | 20,09 ( 20) | B | 3795 (150) | AB |
Rosa Pálido | 1 | 13,00 ( 13) | AB | 1150 (1150) | B |
Blanco | 5 | 9,80 (12) | A | 1350 (1250) | B |
RHPG: recuento de huevos de estróngilos digestivos por gramo de heces | |||||
Fuente: Morales y col, 2010
Al considerar el mismo parámetro hematológico, pero utilizando al color de la conjuntiva ocular como variable de clasificación, observamos la conformación de cinco grupos estadísticamente diferentes para el valor hematocrito:
(Grupo A: conjuntiva blanca; Grupo AB: conjuntiva rosado pálida; Grupo B: conjuntiva rosada; Grupo C: conjuntiva rojo pálida y Grupo D: conjuntiva roja y solo tres grupos para los RHPG, destacando el hecho que con un valor hematocrito superior, los ovinos con conjuntiva rojo pálida (grupo C) se consideran resilientes ya que tuvieron un RHPG estadísticamente. similar al grupo de las ovejas con conjuntiva ocular rosada (sensibles).
Los ovinos clasificados por la carta FAMACHA en los grupos A, AB y B, por tener elevadas cargas parasitarias y los mas bajos valores para el hematocrito, los podemos agrupar bajo la condición de sensibles, mientras que los del grupo D, con bajo recuento de huevos de estróngilos digestivos y el mas alto valor del hematocrito es ubicado como resistente (Cuadro 4).
En conclusión los ovinos resilientes, presentan altas cargas parasitarias pero conservan un valor hematocrito elevado, debido a que ni su salud ni sus cualidades productivas son mayormente afectadas por la acción de los parásitos, pero al igual que en el caso de animales resistentes debemos garantizarles una alimentación de calidad. En el caso de los sensibles, su valor hematocrito es drásticamente afectado por las cargas parasitarias elevadas y su salud y capacidad productiva son fuertemente afectadas y la carta FAMACHA al permitir su identificación al interior del rebaño, es de gran utilidad para la implementación del tratamiento selectivo concentrado en esta fracción de animales.
La comparación entre los RHPG de la fracción de ovinos que según la coloración de la conjuntiva ocular requieren tratamiento con respecto a los que no requieren, resultó con diferencias estadísticamente significativas, evidenciándose el impacto de la escogencia de la fracción de animales a tratar sobre la contaminación del pastizal (Cuadro 5).
Cuadro 5. Comparación entre los recuentos de huevos por gramo de heces de la fracción de animales seleccionados para ser tratados y no tratados en función del color de la conjuntiva ocular
Color Conjuntiva Ocular | Desparasitar | N | RHPG |
|---|---|---|---|
Rosado Rosado Pálida Blanco | Si | 17 | 2920,6 (250) |
Rojo Rojo Pálido | No | 147 | 583,8 (50) |
W | 1843 | P | 0,009*** |
RHPG: recuento de huevos de estróngilos digestivos por gramo de heces | |||
Fuente: Morales y col, 2010
Mediante el sistema FAMACHA solo son sometidos a tratamiento el lote de animales cuyo color de conjuntiva ocular así lo indique; por consiguiente quedarían sin tratar además de los resistentes aquellos en condición de resiliencia.
Evaluación de la Condición Corporal
Bovinos
El estado nutricional de los bovinos se puede evaluar por diversos métodos. La escala de calificación de la condición corporal se revela como una técnica práctica, sencilla y sin requerimiento de aparatos, teniendo como requisito fundamental, que sea realizada por observadores debidamente entrenados, sobre todo si se consideran las dificultades y carencia de instalaciones adecuadas en la mayoría de nuestras fincas. La evaluación visual (Figura 7) basada en el conteo del número de costillas visibles reviste gran interés en este método.
Figura 7. Bovinos seleccionados en base a la condición corporal para tratamiento antihelmíntico o examen coproscópico (arriba), bovinos que no requieren tratamiento antihelmíntico (abajo).
Para realizar la evaluación de la condición corporal se debe observar el animal en su conjunto, haciendo hincapié en la zona lumbar, grupa e inserción de la cola y contando el número de costillas visibles (Martínez y col, 1998). Resultados de observación en animales clasificados en base a una escala de condición corporal que va desde: 1= animales muy flacos, 3 =intermedio y 5= animales obesos; así como el número de costillas visibles, evidenciaron la existencia de una relación inversa con un coeficiente de correlación r = -0.73. La utilización de una escala del 1 al 5 y contando el número de costillas visibles es de interés por lo anteriormente expuesto. En caso de basar la clasificación únicamente en el número de costillas visibles, se considera como gordo a un animal con cero costillas visibles y como caquéctico aquel animal que exhiba siete costillas. En caso de utilizar la escala del 1 al 5 y con fines prácticos, como la selección de la fracción de animales que requieren tratamiento antihelmíntico, se podrían separar en una primera etapa a todos aquellos animales con condición corporal < 3, los cuales o son sometidos a tratamiento o a análisis coproscópico para separar entre animales cuya condición corporal es debida a los niveles de infección por estróngilos digestivos de los de otras causas, y de esta forma reducimos aun más el tamaño de la fracción de animales que requiere tratamiento, concentrando los mismos en aquellos que estrictamente lo necesitan.
Ejemplo:
Se evaluó la relación entre la condición corporal y el nivel de infestación parasitaria en bovinos a pastoreo como criterio para el tratamiento antihelmíntico selectivo. El trabajo se realizó en dos fincas ganaderas localizadas en el Municipio Pedraza del estado Barinas (Venezuela). Una de las fincas fue la Estación Experimental “Ciudad Bolivia” perteneciente al Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias con un rebaño bovino de la raza Criollo Río Limón. La otra era una finca con ganadería mestiza doble propósito orientada hacia la producción de leche, con un rebaño compuesto por bovinos Bos taurus (mestizos Holstein, Pardo Suizo, Carora) y Bos indicus (Brahman). Todos los bovinos del ensayo fueron examinados coproscópicamente mediante la técnica cuantitativa de McMaster y se empleó solución salina sobresaturada como liquido de flotación. Se evalúo la condición corporal por el método de la escala de 1 a 5 (1=flaco; 5=obeso) y 2,5 como punto de inflexión. Los bovinos con una buena condición corporal (>3) y alto recuento de huevos por gramo de heces fueron considerados “resilientes”; pero si la condición corporal era buena y las cargas parasitarias eran nulas, leves o moderadas se consideraban resistentes. Aquellos bovinos con mala condición corporal (<3) y altas cargas parasitarias se ubicaron en el grupo de los sensibles, mientras que los animales con mala condición corporal y negativos a la infestación por estróngilos digestivos se les denominó Falsos Acumuladores de Parásitos o Falsos Sensibles (Cuadro 6).
Cuadro 6. Criterios para la clasificación de los bovinos considerando la condición corporal y el nivel de infestación por estróngilos digestivos expresados en RHPG de heces
Clasificación | Condición Corporal | Nivel de Infección |
|---|---|---|
Resistente | ≥ 3 | Negativo-Leve- Moderada |
Resiliente | ≥ 3 | Alto |
Acumulador de parásitos o sensible | < 3 | Alto |
Falso problema parasitario | < 3 | Negativo |
Fuente: Morales y col., 2012
Ejemplo:
La relación entre la condición de resistencia, resiliencia, sensibles y falso problema parasitario con bovinos discriminados como Bos taurus, Bos indicus y Criollo Río Limón fue establecida mediante análisis de correspondencia simple (Figura 8).
Figura 8. Análisis de Correspondencia entre Bos taurus, Bos indicus y Criollo Río Limón y la condición de Resistente, Resiliencia, Sensible y Falso Problema Parasitario (FPP)
Fuente: Morales y col., 2012
En la figura 8 se puede observar que los bovinos Criollo Río Limón se asociaron con las categorías de resiliencia y resistentes, los Bos taurus con las categorías de sensibles y falsos problema parasitario, mientras que los Bos indicus se asociaron con la categoría de resistente. La condición de resiliencia fue la menos frecuente.
La carga parasitaria correspondiente a cada una de las condiciones o categorías antes mencionadas y la agrupación como Bos taurus, Bos indicus ó Criollo Río Limón es mostrada en el Cuadro 7.

Fuente: Morales y col., 2012
En el cuadro se observa que dentro de los Bos taurus, Bos indicus y Criollo Río Limón se encuentran animales de diferentes condiciones, observándose que al interior de los Bos indicus el 81,8% (9/11), el 38,8%(21/54) en los Bos taurus y el 59,5% (25/42) de los Criollo Río Limón clasificaron como resistentes, mientras que los sensibles y falso problema parasitario correspondieron mayoritariamente a Bos taurus. Los RHPG más bajos se presentan en los bovinos resistentes y en los FPP, y los más altos en los sensibles y los de la condición de resiliencia, correspondiéndole a estas dos ultimas categorías el mayor efecto contaminante de las pasturas, lo cual es de indudable interés epidemiológico.
La condición corporal nos permite agrupar a los animales de un rebaño en dos grandes grupos: los que requieren tratamiento (< 3), que concierne a los sensibles y a los falsos problema parasitario y que incluye a 46 bovinos y los que no requieren tratamiento (> 3) que incluye a los resistentes y a los “resilientes” que suman 61 animales. En ambos grupos hay animales con alto poder y sin alto poder contaminante de la pastura, pero el tratamiento de aquellos bovinos con condición corporal < 3 ocasiona una importante reducción de dicha contaminación debido a ser el grupo en el cual dominan los sensibles que son individuos que albergan altas cargas parasitarias y en el grupo con condición corporal > 3 dominan los bovinos resistentes cuya carga parasitaria es muy baja, pero el no tratamiento de los “resilientes” (altas cargas parasitarias), permite el mantenimiento de poblaciones parasitarias en refugio (larvas en el pastizal aportadas por los animales no tratados), que se encargarían de “diluir” las poblaciones de nematodos resistentes, lo cual disminuye el riesgo de aparición de cepas de parásitos quimioresistentes (FAO, 2003; Angulo y col., 2010). Las poblaciones parasitarias en refugio son consideradas de mayor relevancia para evitar la aparición de cepas de nematodos quimioresistentes en rumiantes, incluso que la frecuencia de los tratamientos y la sub-dosificación (VanWyk, 2001).
Pequeños rumiantes
Además de la observación del animal en su conjunto, se palpan las prominencias de las apófisis espinosas y transversas de las vértebras lumbares (Figuras 9 y 10), así como los músculos del lomo y se utiliza una escala del 1 al 5 presentada en la Figura 11 que permite una adecuada interpretación de la palpación (1= muy flaca; 2= flaca; 3= normal; 4= gorda y 5= obesa).
Figura 9. Palpación de la región lumbar en una oveja
Figura 10. Visualización y representación esquemática de la región lumbar de una oveja
Se debe palpar con las dos manos la zona lumbar, apreciando mediante presión la cantidad de carne y grasa que tiene la oveja. En la condición ideal (Condición 3) el animal está en buenas condiciones, los huesos se sienten, pero redondeados ( no pinchan!!), es decir se nota músculo y grasa encima.
Para Valle (2008), al relacionar el índice de la condición corporal con la productividad, la alimentación, la salud, el bienestar y el manejo de los animales se confiere a los profesionales, técnicos y ganaderos, de una herramienta sencilla pero de gran utilidad para una gestión eficiente de la unidad productiva, lo cual es acorde con nuestros resultados, ya que la misma permite realizar una selección rápida y eficiente de aquellos animales que al interior del rebaño requieren de tratamiento antihelmíntico o para ser sometidos a un diagnóstico diferencial con respecto al parasitismo gastrointestinal y determinar si su deteriorada condición corporal, es una expresión de una alta infestación parasitaria, sin necesidad de realizar exámenes de laboratorio a todo el rebaño (Morales y Pino, 2009; Morales y col., 2012).
Olor de los parásitos
Una perra de raza Pastor Alemán (Figura 12) fue entrenada para detectar ovejas infestadas con parásitos gastrointestinales mediante el olor de sus heces y luego a nivel de laboratorio se identificaron moléculas de olor asociadas con la presencia de Teladorsagia circumcinta en dichos ovinos. Las moléculas específicas asociadas con el olor fueron determinadas mediante un espectrómetro de masa y el objetivo principal del proyecto es identificar dichas moléculas y relacionarlas con los parásitos de mayor importancia para diseñar una “Nariz Electrónica” manual mediante el cual los criadores puedan chequear individualmente a cada animal y realizar la selección de aquellos que deben ser sometidos a tratamiento antihelmíntico. Eventualmente, el detector manual podría ser mejorado y empleando la tecnología de los biosensores los ovinos serian chequeados automáticamente, lo cual haría innecesaria la participación del granjero en la detección individual.
Figura 12. La perra SEB (Smell Experiment B) entrenada para seleccionar ovinos infestados con parásitos gastrointestinales
Figura 11. Escala para interpretar la palpación de la región lumbar en ovejas
Conclusiones
- Los tratamientos antihelmínticos selectivos reducen la cantidad de dosificaciones al concentrarse las mismas sobre aquellos animales más sensibles a la infestación y que son a la vez los responsables de la mayor contaminación de los pastizales.
- La idea central de los tratamientos antihelmínticos selectivos es sencilla, si se asume que los animales afectados presentan síntomas que pueden ser utilizados como marcadores parasitológicos, que facilitan su escogencia al interior del rebaño, lo cual puede ser combinado con la coproscopía cuantitativa para descartar al interior de dicho lote los animales que sean posibles falso problema parasitario.
- La reducción en el uso de antihelmínticos en los programas TAS, favorece el mantenimiento de poblaciones de parásitos en refugio, lo cual reduce la presión de selección limitando el desarrollo de cepas de parásitos quimioresistentes, además de minimizar la contaminación ambiental (efectos nocivos de las lactonas macrocíclicas contra la fauna edáfica) y se mejora la calidad de los derivados lácticos y cárnicos que consumimos.
:
:
Bibliografía
- Anderson, R. (1982). Parasite dispersion patterns: generative mechanims and dynamic consequences. In: Aspects of parasitology,(Edited by Meerovictch,E)p.1-40. Institute of Parasitology, McGill University, Montreal, Canada.
- Angulo, F ; Parra, A ; Urdaneta , A ; Chacin , E ; Ramirez , R. ( 2010). Efecto de diferentes estrategias de control antihelmíntico sobre nematodos gastrointestinales en terneras doble propósito.Rev. Científica, FCV-LUZ; 20(6):595-599
- Baker, R. (1999). Genetic resistance to endoparasites in sheep and goats in the tropic and evidence for resistance in some sheep and goats breeds in sub-humid coastal Kenya. Animal Genetic Resources Information. 24: 13-30.
- Barger, J. (1985). The statistical distribution of trichostrongylid nematodes in grazing lambs. International Journal for Parásitology. 15: 645 – 649.
- Batch, G.; Hansen, J.; Krecek, R.; Vanwyk, J.; Vatta, A. (2001). Sustainable approaches for managing haemonchosis in sheep and goats Final report of F.A.O. Technical Cooperation in Africa. Project No. TCP/ SAF/8821 (a), F.A.O.; Roma. 90 pags.
- Bisset , S. (2000). Practical ways of implementing identification of host resistance in sheep and its use in breeding programmes. In: “F.A.O TCP Workshop Sustainable Worm Control Programmes for Sheep and Goats” South Africa. pags 16-21.
- Bisset ,S.; Morris , C. (1996). Feasibility and implication of breeding sheep for resilience to nematode challenge. International Journal for Parasitology. 86:869–877.
- Cabaret, J ; G. Morales (1983). Stratégie comparée des infestations naturelles par Teladorsagia circumcincta et T. Trifurcata chez les ovins. Parásitologia 25: 171-177.
- Coles, G.; Roush, R. (1992). Slowing the spreed of anthelmintic resistant nematodes of sheep and goats in the United Kingdom. The Veterinary Record; 130: 505-510.
- Cundiff, L. (1985). Quantitative genetic approaches to breeding for genetic resistance to disease in cattle. Characterization of the bovine immunosystem and the genes regulating expression of immunity with particular reference to their role in disease resistance(Procceding), College of Veterinary Medicine, Washinton State University, U.S.A ; 217 pag
- Doménech, J. (1982). Bioestadística. Métodos estadísticos para investigadores. Editorial Herder. Barcelona, España. 648 pp.
- Donald, A. (1973). Bionomics of the free –living stages of gastrointestinal nematodos of sheep in relation to epidemiology. Proc. Nº19. University of Sydney,Australia.
- A.O. (2003). Resistencia a los antiparasitarios: Estado actual con énfasis en América Latina. Dirección de Producción y Sanidad Animal. No. 157. Roma. 52 pags.
- Gibbons, L. (1979). Revision of the genus Haemonchus, Cobb, 1898 (Nematoda: Trichostrongylidae). Systematic Parasitology. 2: 219 – 252.
- Gray, G. (1997). Genetic resistance to haemonchosis in sheep. Parasitology Today. 8: 253-255.
- Gruner, L.; Cabaret, J. (1985). Current methods for estimating parasite populations: potential and limits to control gastrointestinal and pulmonary strongyles of sheep on pasture. Livestock Production Science. 13: 53-70.
- Hansen, J.; Perry, B. (1994). The epidemiology, diagnosis and control of helminth parasites of ruminants. International Laboratory for Research on Animal Diseases. Nairobi, Kenya. 171 pp.
- Levine, N.(1963).Weather,climate and bionomics of ruminants nematode larvae. Adv.Vet.Sci ;8:215-261
- Luffau, G.; Perry, P.; Petit, A. (1981). Self-cure and immunity following infection and re-infection with ovine haemonchosis Veterinary Parasitology. 9: 57-67.
- Malan , F.; Van Wyk, J.; Wessel, C. (2000). Clinical evaluation of anaemia in sheep: early trials In: “ F.A.O. TCP Workshop Sustainable Worm Control Programmes for Sheep and Goats”. South Africa. pags. 34-39.
- Malan, F.; Van Wyk, J. (1992). The packed cell volume and colour of the conjuntivae as aids for monitoring Haemonchus contortus infestations in sheep. Proceedings of the South Africa Veterinary Association. Biennial National Veterinary Congress. Grahamstown. 139 pp.
- Mandonnet, N. (1995). Analyse de la variabilité génétique de la résistance aux strongles gastro-intestinaux chez les petits ruminants. Eléments pour la définition d´objectifs et de critères de sélection en milieu tempéré ou tropical. Thèse Docteur en Sciences. Université de Paris. Orsay. France. 115 pp.
- Martínez , N ; Herrere , P; Birbe, B ; Dominguez , C (1998). Relación entre la condición corporal y la respuesta reproductiva de hembras bovinas de doble propósito. En : Madrid, N ; Soto , E (editores). Mejora de la ganaderia mestiza de doble propósito . Maracaibo, Venezuela Astro Data . pags 398 – 412.
- Mitchell, G (1982).Host protective immune responses to parasites and evasión by parasites:Generalizations and approaches to análisis, McMaster Laboratory 50th Anniversary Simposium in Parasitology, Academic Press Australia; pag .331-342
- Morales, G.; Pino, L. (1987). Eco-epidemiología de Haemonchus contortus bahiensis, ecotipo presente en ovinos de zonas áridas de Venezuela. Inst. Oswaldo Cruz. Río de Janeiro. 82 (3): 359 – 369. (Premio CONICIT 1988).
- Morales, G. (1989). Epidemiología y sinecología de los helmintos parásitos de ovinos y caprinos de zonas áridas del estado Lara (Venezuela). Revista de la Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Central de Venezuela. 36:10-52.
- Morales, G.; Pino, L.; Bravo, A. (1992). Diferenciación de especies congenéricas de Haemonchus mediante funciones discriminantes. Revista Científica, FCV – LUZ. 2(1):53 – 58
- Morales, G.; Pino, L.; Sandoval, E.; Moreno, L. (1998). Importancia de los animales acumuladores de parásitos (wormy animals) en rebaños de ovinos y caprinos naturalmente infectados. Analecta Veterinaria.18:1–6.
- Morales, G ; Pino, L. A; Sandoval , E; Moreno, L; Jiménez ,D; Balestrini , C. (2001). Dinámica de los niveles de infestación por Estróngilos digestivos en bovinos a pastoreo. Parasitología al Día , 25:115–120.
- Morales, G.; Pino, L.; León, E.; Rondón, Z.; Guillén, A.; Balestrini, C.; Silva, M. (2002a). Relación entre los parámetros hematológicos y el nivel de infestación parasitaria en ovinos de reemplazo. Veterinaria Trop. 27 (2): 87-98.
- Morales, G.; Pino, L.; León, E.; Rondón, Z.; Guillén, A.; Balestrini, C.; Silva, Ma. (2002b). Niveles de infección parasitaria en ovinos de reemplazo naturalmente infectados. Veterinaria Trop. 27 (2): 123 – 135.
- Morales, G.; Pino, L. (2003). Carga parasitaria de nematodos gastrointestinales y la riqueza específica en ovinos naturalmente infectados. Veterinaria Argentina. 20:100 – 108.
- Morales, G.; Sandoval, E.; Pino,L.; Jimenez, D. (2005).Utilización de rumiantes domésticos genéticamente resistentes a la infección por estróngilos digestivos en estrategias de control. CENIAP HOY. Número 8. url:http://www.ceniap.gov.ve/ceniaphoy/index.htm.
- Morales, G.; Pino, L.; Sandoval, E.; Florio, J.; Jiménez, D. (2006a). Niveles de infestación parasitaria, condición corporal y valores de hematocrito en bovinos resistentes, resilientes y acumuladores de parásitos en un rebaño Criollo Río Limón. Zootecnia tropical. 24(3):333–346.
- Morales, G.; Pino, L.; Sandoval, E.; Florio, J; Jiménez, D. (2006b). Niveles de infestación parasitaria y condición corporal en bovinos doble propósito infestados en condiciones naturales. Revista Electrónica de Veterinaria REDVET. ISSN 1695-7504. Vol. VII. N°04, Abril/2006. http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n040406.html
- Morales, G.; Sandoval, E.; Pino, L.; Balestrini C.; García, F. (2007). El control de la infestación por estróngilos digestivos en rumiantes domésticos bajo principios de la agricultura de precisión. Revista Electrónica de Veterinaria REDVET. 8(8) http://.www. veterinaria.org/revistas/redvet/n080807/080716.pdf.
- Morales, G.; Pino, L. (2009). Nemátodes parásitos de los rumiantes domésticos en Venezuela: diagnóstico y control. Editado por Laboratorio de Diagnóstico Veterinario “Aliani”. Impreso en Talleres Gráficos Dot Print C.A , Caracas. 143 pp.
- Morales , G ; Guillen , A ; Pinho , A ; Pino , L.A ; Barrios , F (2010).Clasificación por el metodo FAMACHA y su relación con el valor de hematocrito y recuento de h.p.g de ovinos criados en condiciones de pastoreo. Zootecnia Trop; 28 (4):545 – 555
- Morales G; Pino, L.A; Sandoval, E; Jiménez, D; Morales, J. (2012). Relación entre la condición corporal y el nivel de infestación parasitaria en bovinos a pastoreo como criterio para el tratamiento antihelmíntico selectivo. Inv. Vet. Perú; 23(1):80–89
- Pence, D; Crum, J; Conti, J. (1983). Ecological analises of helminth populations in the black bear Ursus americanus from North America. The Journal of Parasitology.69:933-950.
- Pino, L.; Morales, G.; Aldana, E.; Perdomo, L.; Molina, E. (1986). Caracterización micro-ecológica de los nematodos parásitos de ovinos de zonas áridas de Venezuela. (Un nuevo criterio para el control). Revista Ibérica de Parasitología. 46: 395-401.
- Pino, L.; Morales, G.; Sandoval, E.; Moreno, L. (1998). Biodiversidad y similaridad en la comunidad de parásitos de ovinos y caprinos naturalmente infectados en zonas áridas de Venezuela. Veterinaria Tropical. 23: 109-115.
- Pino, L ; Morales, G (2002).Distribución y abundancia de los huevos de Estróngilos digestivos y de los ooquistes de Eimeria spp en las heces de ovinos estabulados. Veterinaria Tropical; 27: 5-15
- Preston, T.; Leng, R. (1989). Ajustando los sistemas de producción pecuaria a los recursos disponibles: Aspectos básicos y aplicados del nuevo enfoque sobre la nutrición de rumiantes en el trópico. Consultorías para el Desarrollo Rural Integrado en el Trópico (CONDRIT ) Ltda , Cali , Colombia. 311 pp.
- Roberts, J.; Swan, R. (1982). Quantitative studies of ovine haemonchosis. The interpretation and diagnostic significance of the changes in serial egg counts of Haemonchus contortus in a sheep flock. Veterinary Parasitology. 9:211 – 216.
- Stear, M.; Murray, M. (1994).Genetic resistance to parasitic disease :particularly of resistance in ruminants to gastrointestinal nematodes. Veterinary Parasitology. 54 :161-176
- Urquhart, G; Armor , J ; Duncan , J ; Dunn, A ; Jennings, F (1999). Veterinary Parasitology. Blackwell Science, Glasgow, Scotland,307 pp.
- Valle, A. (2008). Vacunos en America. Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias. Publicación Especial Nº 24, 326 pags.
- VanWyk, J. (2001). Refugia- overlooked as perhaps the most potente factor concerning anthelmintic resistance. Onderstepoort J. Vet. Res; 68 :55 – 67
- Van Wyk, J.; Bath, G. (2002). The Famacha system for managing haemonchosis in sheep and goats by clinically identifying individual animals for treatment. Vet. Res. 33: 509: 529
- Viera, L.; Calvacante, A. (1999). Antihelmintic resistance in goat herds in the state of Ceará . Pesquisa Veterinária Brasileira. 19 :99–103.
- Waid, D ; Prince , D ; Warren , R (1985). Effects of season and physical conditions on the gastrointestinal helminth community of white tailed deer from the Texas Edwards Plateau. Journal of Wildlife diseases. 21:264:273
















